一般情况下鱼缸水质良好时弧菌不会对生物造成伤害,但水质变差或波动时弧菌有可能会趁虚而入,本帖主要对fot缸有参考意义。 1. TCBS培养基显色原理 弧菌是海水环境中的常在菌群,广泛分布在自然海区,是一种条件致病菌,但当动物受伤、体弱、抗病力降低和环境条件恶化时,弧菌会乘虚而入,引起发病。 弧菌有许多致病种类和菌株,可引起皮肤溃疡、烂尾、烂鳍、出血等症状,导致动物对外界反应迟钝,摄食率下降或停止摄食等,严重可导致大量死亡。 目前常见使用TCBS琼脂培养基进行水体中的弧菌检测。 TCBS 琼脂培养基,即硫代硫酸盐柠檬酸盐胆盐蔗糖琼脂培养基。 用途:用于霍乱、副溶血性弧菌的分离培养。 成分: 蛋白胨10.0g,酵母粉 5.0 g,氯化钠10.0g,柠檬酸钠(2H2O)10.0g,牛胆汁粉5.0g,蔗糖20.0g ,柠檬酸铁1.0g,胆酸钠3.0g,硫代硫酸钠(5H2O)10.0g,溴麝香草酚蓝0.04g, 麝香草酚蓝0.04g, 琼脂15.0g, pH值8.6 ± 0.2。 TCBS培养基中各成分作用: 培养基中的蛋白胨、酵母浸粉提供碳氮源、维生素和生长因子; 氯化钠提供嗜盐弧菌的最佳生长和代谢条件,并形成高渗透压,使其他一些细菌很难生长; 蔗糖是可发酵的糖类,利用指示剂来区分是否发酵蔗糖; 柠檬酸铁和硫代硫酸钠是硫化氢指示系统,如果待测菌产生硫化氢,与指示剂反应产生黑色沉淀,使培养基变黑。 胆酸钠、牛胆粉、硫代硫酸钠和柠檬酸钠及较高的pH可抑制革兰氏阳性菌和大肠菌群; 碱性条件能够在一定程度上抑制肠道菌的生长,也能促进霍乱弧菌的生长,霍乱弧菌对酸性条件敏感; 琼脂是培养基的凝固剂; 溴麝香草酚蓝,麝香草酚蓝这两个化合物是指示剂。 溴麝香草酚蓝是一种酸碱指示剂,变色范围pH6.0(黄)~7.6(蓝),较低浓度的CO2使其由蓝变绿,较高浓度CO2使其由蓝变绿再变黄,当中过渡颜色是绿色。 麝香草酚蓝有两种变色范围:(1)酸范围为pH1.2(红色)~2.8(黄色);(2)碱范围为pH值8.0(黄色)~9.6(蓝色)。 其中培养基上菌落显色原理如下: 凡是不能发酵蔗糖的弧菌就不产酸,只能利用柠檬酸钠作为碳源,然后生成碳酸盐,使培养基pH升高,在 TCBS培养基上都是蓝绿色(或深绿色); 能够发酵蔗糖的弧菌可以产酸(乳酸),使培养基pH降低,在TCBS培养基上的颜色就为黄色。 如果菌株能够产生H2S,则遇到培养基中的铁离子(柠檬酸铁)就会生产FeS显示黑色。 培养皿中出现培养时间稍长黄色菌落转变为绿色菌落原因:利用蔗糖后产生乳酸在培养基上呈黄色菌落,培养时间过久,蔗糖消耗完后,营养缺乏,某些菌种能够利用乳酸,将乳酸分解后菌落颜色由黄色变绿色,误判为绿弧菌,解决方法为将培养基倒厚,培养时间适中。 TCBS培养基上几种颜色和大致判断菌种: (1) 绿色:副溶血弧菌、河流弧菌、恶臭假单胞菌 (2) 黄色:溶藻弧菌、霍乱弧菌、哈维弧菌、鳗弧菌、温和气单胞菌 (3) 淡黄无色:变形杆菌、肠球菌 (4) 蓝色:假单胞菌、气单胞菌 (5) 蓝绿色:创伤弧菌 (6) 中间黑,边缘黄:变形杆菌 (7) 芽孢杆菌可在该培养基中生长显黄色菌落 2. 弧菌检测的操作规范 2.1 方法原理 平板计数法是根据单一的细菌在平板培养基上,经若干时间培养,可形成一个肉眼可见的子细胞群(菌落)(亦即一个菌落代表一个细胞),通过计算菌落数而得知细菌数的。计数关键是必须尽可能将样品中的细菌分散成单个细胞,并制成均匀的不同浓度稀释液,将一定量的稀释液均匀地接种到盛有固体培养基的培养皿上(以下简称平皿)。 2.2 实验仪器与材料:
(1) 培养皿:直径90mm; (2) 恒温培养箱(37℃); (3) 超净工作台; (4) 电炉:2000W; (5) 离心管(2/4mL); (6) 无菌涂布棒; (7) 移液枪(100µL、1mL); (8) 移液枪头; (9) 锥形烧瓶 (10) 牛皮纸 (11) 酒精灯
2.3 培养基制备 (1) 将TCBS琼脂按照89.10g/1L 蒸馏水的比例混合,加热煮沸,使其充分溶解; (2) 待琼脂溶液 温度冷却 至约55℃ ,倒入直径规格为90mm的无 菌平 皿(15mL/平皿)中,静置 冷却凝固约2.0h ,用封口膜封好,置4℃冰箱内(可保存15d)或常温(可保存5~7d)保存,待 用。2.4 测定步骤 2.4.1 水体的弧菌检测方法 (1) 提前约1.0h将已配制的培养皿倒置于超净工作台,并使平皿与皿盖保持半开状态,同时开启紫外光照射,使其内部水蒸气充分挥发,避免污染。 (2) 以无菌操作方法吸取水样注入盛有灭菌生理盐水的离心管内混匀,并依同法依次连续稀释至所需要的稀释度(10、10-1、10-2等)。稀释度依水样含菌量而定,以每平皿的菌落数在30个~300个之间为宜。每种稀释度需有3个平行样; (3) 取稀释好的水样0.1mL,滴入备好的平皿上,用灭菌玻璃涂布棒将菌液涂抹均匀(于酒精灯外焰附近进行操作),并写好标签,平放于超净工作台上20~30min,使菌液渗入培养基; (4) 将平皿倒置(皿盖贴下面)于37℃恒温培养箱内进行培养。培养24h观察平皿上的菌落生长情况,并进行菌落计数。 2.4.2 弧菌检测方法 (1) 提前约1.0h将已配制的培养皿倒置于超净工作台,并使平皿与皿盖保持半开状态,同时开启紫外光照射,使其内部水蒸气充分挥发,避免污染。 (2) 将鱼倒到过滤纱布上,用无菌水来清洗,将黏附在鱼上杂质清洗干净;用经酒精灯火焰灼烧过的镊子(冷却后使用)取出部分组织放到离心管中;再加无菌水清洗两遍。向装有组织的离心管中加入0.4mL生理盐水稀释5倍,用研磨棒将组织捣碎,然后放在振荡器上振荡,使其充分混合。取100µL的样本加入到已经装有900µL生理盐水的离心管中,再次振荡使其充分混合。 (3) 取稀释好的混合液0.1mL,滴入备好的平皿上,用灭菌玻璃涂布棒将菌液涂抹均匀(于酒精灯外焰附近进行操作),并写好标签,平放于超净工作台上20~30min,使菌液渗入培养基; (4) 将平皿倒置(皿盖贴下面)于37℃恒温培养箱内进行培养。培养24h观察平皿上的菌落生长情况,并进行菌落计数。 2.5 菌落计数方法 (1). 用肉眼直接观察,必要时用放大镜或菌落计数器检查,以防遗漏。平行组的3个平板的菌落数应该接近,不同稀释度的几个平皿上菌落数则应与水样稀释倍数成反比,即水样稀释倍数越大,菌落数越低,稀释倍数越小,菌落数越高。 (2). 菌落计数时,应选取菌落数在30~300之间的平板作为菌落数总数测定的标准。一个稀释度3个平行样,菌落数应该很接近,应取3个平板的平均数;如在一个稀释度的两个平板中,一个平板的菌落数在30~300之间,另一个大于300或小于30时,则以菌落数在30~300间的平板作为菌落计数的标准。 表1 不同条件下菌落计数方法 | | | | 若平均菌落数∈(30, 300),则取菌落数×稀释倍数; 若各平板差异较大,其他稀释度无明显差异,以其他稀释度的平均菌落数为准。 | | 若菌落数均∈(30, 300),则由稀释倍数较高菌落数与稀释倍数较低菌落数比值决定: 若比值≥2,则取较小的值计数; 若比值<2,则取均值计数。 | | (1). 若所有稀释度的平均菌落数均>300,则取最高稀释度的平均菌落数×稀释度; (2). 若所有稀释度的平均菌落数均<30,则取最低稀释度的平均菌落数×稀释度; (3). 若所有稀释度的平均菌落数均=0,则取1×最低稀释度为菌落数; (4). 若所有稀释度的平均菌落数均∉(30,300),则取接近30或300的平均菌落数×稀释度。 | | (1). 若有较大片状菌落生长时,则不宜采用; (2). 若片状菌落不到平板的一半,另一半菌落数分布很均匀,则此半个平板计数后乘2以代表全皿菌落数; (3). 若出现链状菌落,以一条链作为一个菌落计 。 |
2.6 注意事项 (1). 操作过程应在无菌环境下进行; (2). 将水样滴加至培养基前,应保证培养基呈半干状态,避免涂布不均匀,影响检测结果; (3). 稀释水样采用无菌生理盐水; (4). 涂布前应避免涂布棒温度过高,否则会使部分菌落被烫死。 以上为实验室操作,个人可以酌情简化操作。
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